一、造模方法
选用250~300gWistar大鼠,可以在清醒和自由运动状态下制作严重的脑缺血和恒定的病理学改变。该模型分2个阶段制作:
第一阶段:将动物麻醉,安置在脑立体定位仪上，调节耳杆和门齿高度使鼠头前倾约30°,同时用橡皮栓住鼠尾给以轻度的牵拉力,使颈椎伸直,翼孔呈水平位,便于观察。在枕骨后第一、二颈椎的位置作一约1cm 长的切口,从中央向两侧分离背阔肌和斜方肌,然后借助手术显微镜分离暴露第一颈椎的横突翼并找到左、右横突孔(椎动脉在入脑前从此孔下通过)。翼孔下有两侧椎动脉通过,用小的单极或双极电凝器插入翼孔烧灼闭塞双侧椎动脉。
二、模型评估
这是一个广泛应用的脑缺血模型,能导致大脑严重缺血,又有高度可重复性。实验在动物清醒条件下进行,当夹闭CCA时不再应用麻醉剂且动物很少出现癫痫发作,也不需与缺氧或降压等方法合用,实验条件更为理想。可用于研究脑缺血后脑血流,也可进行代谢、行为学及神经保护等的评价研究。尤其在脑缺血的实验研究方面有着广泛的用途。
检测平台
| 服务项目 | 服务承诺 | 服务周期 | 样本种类 |
| 病理切片、免疫组化 | 染色结果照片 | 2-3周 | 组织 |
| Western blotting | 胶片 | 1-2周 | 蛋白样本或组织 |
| 流式细胞服务 | 散点图、分析数据、设备信息等 | 1-2周 | 血样、骨髓等 |
| 细胞凋亡检测 | 凋亡图、数据分析 |
| 细胞 |
| RT-PCR | 扩增图 | 1-2周 | RNA或组织 |
| 血压监测（无创式） | 实时血压数据 |
| 大、小鼠 |
该产品被引用文献
张雯, 杜立达, 宋俊科, 杜冠华. 缺血性脑损伤实验动物模型制备及评价[J]. 中国药理学通报, 2022, 38(8): 1266-1271.
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。所以对手术后模型是否成功应该进行筛选的。 另一方面，如果你做了预防给药，药效的作用也容易被认为是模型不成功，这也需要后边进行脑组织染色和组织血检查进行验证。脑组织检查时可剔除模型不成功以及SAH的个例。 故实验在手术后要进行行为学评分，试验结束时应对脑组织进行组织学检查或染色。TTC染色是采用的宏观标本染色，确定梗死面积可采用体积法或面积法，但最好用扫描仪将脑组织切片进行扫描，选择合适的软件统计梗死面积。 3.大鼠大脑中动脉永久性闭塞性脑缺血模型，梗死体积出现的最小时间点可能为2h，体积随时间
